吃瓜网免费官网

一、实验前准备

1. ?动物处理?

• 需禁食24小时（不禁水）以减少消化道内容物干扰
  

• 处死方法优先选择击打头盖骨法（抓住尾部提起后用硬物猛击头部）或过量麻醉法（30倍麻醉剂量注射）
  

2. ?器械准备?

• 需备齐无齿镊、固定针及充氧营养液（37℃恒温）
  

• 电镜取材需预冷戊二醛固定液（1分钟内完成组织转移）
  

二、解剖取材流程

1. ?体腔暴露?

• 仰卧位固定后，沿腹中线剪开皮肤及肌肉层，向上剪开胸骨暴露胸腹腔
  

• 优先观察有无腹水或肉眼病变，记录脏器位置异常
  

2. ?器官取材规范?

• ?消化系统?：空腔脏器（如肠管）需沿肠系膜分离，平铺滤纸上固定；肠段标本通常取1.5肠尘，两端结扎线固定
  

• ?肝胆系统?：豚鼠胆囊需连胆管整体摘取，可沿长轴剖开分为两半使用
  

• ?特殊部位?：内淋巴囊取材需显微镜下经颅定位，组织学验证位置准确性
  

叁、样本处理要点

1. ?病理取材?

• 病变组织需包含病灶全貌及交界区（如肿瘤需取转移灶和切缘）
  

• 标准取材尺寸建议1.5×1.5×0.5肠尘，避免挤压/刮抹损伤
  

2. ?电镜样本?

• 必须在离体1分钟内放入戊二醛固定液，器官取材部位要精确（如肾皮质而非髓质）
  

• 组织块厚度不超过1尘尘?，刀片需锋利避免人工假象
  

四、辅助技术

1. ?活体采血?

• 足背中静脉采血：酒精消毒后针刺静脉，采血后纱布压迫止血
  

• 心脏采血：方法与家兔采血相似，成年豚鼠平均可获2.5尘濒血液
  

2. ?气道模型取材?

• 变应性炎症模型需经气管行鼻腔/肺部灌洗，灌洗液回收率可达80%
  

五、注意事项

• 操作全程保持器械无菌，消化系统取材需用生理盐水冲洗粘液
  

• 电镜样本避免使用金属器械接触，建议用竹签转移组织
  

• 群居豚鼠需单独隔离后再取材，减少应激干扰